Саратовский научно-медицинский ЖУРНАЛ

Сравнительные исследования выхода однонитевых разрывов и щелочнолабильных сайтов ДН К при воздействии 365 нм ультрафиолетового и рентгеновского излучений на лимфоциты периферической крови человека

Резюме:

Цель; сравнить количественный выход однонитевых разрывов (ОР) и щелочнолабильных сайтов (ЩС) ДНК, индуцированных 365 нм ультрафиолетовым (УФ) и рентгеновским излучениями в лимфоцитах периферической крови человека in vitro. Материал и методы. Выделение лимфоцитов крови человека проводили путем центрифугирования в градиенте плотности фикол-верографин. Облучение клеток проводили на УФ-установке BLX-365 (длина волны 365±10 нм) и рентгеновской биологической установке РУБ РУСТ-М1. Анализ ОР и ЩС ДНК проводили с использованием метода ДНК-комет в щелочных условиях. Результаты. Впервые показано, что выход ОР и ЩС ДНК в лимфоцитах крови человека при воздействии 365 нм УФ излучения в дозе 10 кДж/м2 соответствует эффекту рентгеновского излучения ~ в дозе 1 Гр. Заключение. Воздействие 365 нм УФ излучения в дозе 1 кДж/м2 на лимфоциты периферической крови человека индуцирует -100 ОР ДНК на клетку.

Литература:
1. Chronic UVA irradiation of human HaCaT keratinocytes induces malignant transformation associated with acquired apoptotic resistance / Y.Y. He, J. Pi, J.L. Huang [et al.] // Oncogene. 2006. Vol. 25. P. 3680-3688; 2. Ridley A.J., Whiteside J.R., McMillan T. J., Allinson S. L. Cellular and sub-cellular responses to UVA in relation to carcinogenesis // Int. J. Radiat. Biol. 2009. Vol. 85 (3). P. 177-195; 3. UV irradiation increases ROS production via PKCdelta signaling in primary murine fibroblasts / O. Bossi, M. Gartsbein, M. Leitges [etal.]// Cell Biochem. 2008. Vol. 105(1). P. 194-207; 4. Cooper K. L, Liu K.J., Hudson L.G. Enhanced ROS production and redox signaling with combined arsenite and UVA exposure: contribution of NADPH oxidase // Free Radical Biol. Med. 2009. Vol. 47 (4). P. 381-388; 5. Najafzadeh M., Baumgartner A., Gopalan R. [et al.] In vitro sensitivities to UVA of lymphocytes from patients with colon and melanoma cancers and precancerous states in the micronucleus and the Comet assays// Mutagenesis. 2012. Vol. 27 (3). P. 351-357; 6. DNA damage after acute exposure of mice skin to physiological doses of UVB and UVA light /A.R. Svobodova, A. Galandakova, J. Sianska [et al.] //Arch. Dermatol. Res. 2012. Vol. 304(5). P. 407-412; 7. Сметанина H.M., Пустовалова M.B., Осипов A. H. Модифицированный метод ДНК-гало для оценки повреждений ДНК, индуцированных различными генотоксическими агентами // Радиационная биология: Радиоэкология. 2013. Т. 53, № 4. С. 389-393; 8. Mascotti К., McCullough J., Burger S. R. HPC viability measurement: trypan blue versus acridine orange and propidium iodide // Transfusion. 2000. Vol. 40 (6). P. 693-696; 9. Оценка молекулярных и цитогенетических эффектов хронического воздействия низкоинтенсивного у-излучения у мышей / А. Н. Осипов, А. Л. Елаков, П. В. Пучков [и др.] // Генетика. 2002. Т. 38, № 10. С. 1345-1350; 10. Мязин А.Е., Осипов А. Н., Елаков А. Л., Сыпин В. Д., Шевченко В. А. Оценка методом ДНК-комет однонитевых разрывов ДНК лимфоцитов селезенки в отдаленные сроки после острого облучения мышей в сублетальных и среднелеталь-ных дозах // Радиационная биология: Радиоэкология. 2002. Т. 42, вып. 6. С. 731-734; 11. Comparison in vivo study of genotoxic action of high versus very low dose-rate y-irradiation /A. N. Osipov, D.Y. Klokov, A. L. Elakov [et al.] // Nonlinearity in Biology, Toxicology and Medicine. 2004. Vol. 2, № 3. P. 223-232; 12. Roots R., Okada S. Protection of DNA molecules of cultured mammalian cells from radiation-induced single strand scissions by various alcohols and SH compounds // Int. J. of Radiat. Biol. 1972. Vol. 21. P. 329-342; 13. UVcausationofmelanomainXiphophorusisdominated by melanin photosensitized oxidant production / S. R. Wood, M. Berwick, R.D. Ley [et al.] // Proc. Natl. Acad.Sci. USA. 2006. Vol. 103. P. 4111-4115; 14. Kawanishi S., Hiraku Y. Sequence-specific DNA damage induced by UVA radiation in the presence of endogenous and exogenous photosensitizers// Curr. Probl. Dermatol. 2001. Vol. 29. P. 74-82; 15. Cadet J., Douki T. Oxidatively generated damage to DNA by UVA radiation in cells and human skin // J. Invest. Dermatol. 2011. Vol. 131 (5). P. 1005-1007; 16. Ridley A.J., Whiteside J.R., McMillan T. J., Allinson S. L. Cellular and sub-cellular responses to UVA in relation to carcinogenesis // Int. J. Radiat. Biol. 2009. Vol. 85 (3). P. 177-195; 17. Singlet oxygen induces oxidation of cellular DNA / J. L. Ravanat, P. Di Mascio, G. R. Martinez [et al.] // J. Biol. Chem. 2001. Vol. 276. P. 40601-40604; 18. Cadet J., Douki T, Ravanat J. L., Di Mascio P. Sensitized formation of oxidatively generated damage to cellular DNA by UVA radiation // Photochem. Photobiol. Sci. 2009. Vol. 8 (7). P. 903-911; 19. Ward J. F. DNA damage produced by ionizing radiation in mammalian cells: identities, mechanisms of formation, and reparability // Prog. Nucleic Acid Res.Mol. Biol. 1988. Vol. 35. P. 95-125.

Прикрепленный файлРазмер
2013_04-01_791-795.pdf323.3 кб

Голосов пока нет